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    腺相關(guān)病毒載體基因治療產(chǎn)品的色譜分析策略

    更新時(shí)間:2023-08-10      點(diǎn)擊次數(shù):1648

    近年來(lái),大家對(duì)基因治療藥物的關(guān)注激增。為了保證治療有效,必須將轉(zhuǎn)基因(基因載荷)正確地運(yùn)送到目標(biāo)細(xì)胞內(nèi)。其中腺相關(guān)病毒(AAV)作為載體具有眾多優(yōu)點(diǎn),因此被廣泛用作基因運(yùn)送工具。

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    隨著AAV在臨床上的應(yīng)用越來(lái)越廣泛,了解它的質(zhì)量屬性對(duì)產(chǎn)品療效和安全性的影響變得很有必要。目前用于表征AAV的分析技術(shù)也有很多,其中包含離子交換色譜(IEX)、體積排阻色譜(SEC)、反相液相色譜(RPLC)和親水作用色譜(HILIC)等的色譜方法被越來(lái)越多地應(yīng)用起來(lái)。以下是四種表征AAV的色譜分析策略分享。



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    陰離子交換色譜法(AEX)

    測(cè)定AAV中空衣殼和完整衣殼含量

    • Protein-Pak Hi Res Q, 5 μm, 4.6×100 mm(部件號(hào):186004931


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    圖1. 在Protein-Pak Hi Res Q?譜柱上分離AAV8空?殼和完整?殼混合物。20 mM Tris pH 9,NaCl在20 min內(nèi)從 0增加?300 mM,流速0.4 mL/min。a?c)進(jìn)樣6 μL。a) 260 nm處的TUV。b) 280 nm處的TUV。c)熒光檢測(cè):激 發(fā)波?280 nm,發(fā)射波?350 nm。d)進(jìn)樣0.5 μL的熒光檢測(cè)結(jié)果。20 mM Tris pH 9,NaCl在20 min內(nèi)從50增加 ?250 mM,流速0.4 mL/min。

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    圖2. 使?優(yōu)化的AEX?法定量各種AAV8空?殼和完整?殼混合物中的空?殼百分?。


    A. 

    UV檢測(cè)結(jié)果:由于260 nm處病毒DNA的吸光度高于衣殼蛋白,280 nm處衣殼蛋白吸光度高于DNA,所以完整衣殼在260 nm處的峰面積大于280 nm處,而空衣殼在260 nm處的峰面積小于260 nm處;

    B. 

    同樣的分離方法下,熒光信號(hào)遠(yuǎn)高于UV檢測(cè)信號(hào);

    C. 

    使用從緩沖液pH值、鹽類(lèi)型、緩沖液類(lèi)型和鎂離子濃度等方面優(yōu)化的AEX分離方法后監(jiān)測(cè)AAV8樣品中的空衣殼/完整衣殼,得到較好的線性結(jié)果。


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    體積排阻色譜法(SEC)
    • XBridge Premier GTx BEH SEC色譜柱,450?,2.5 µm,4.6 x 150 mm(圖片部件號(hào):186010584

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    圖3. 分別使用流速0.6 mL/min(2.5 μm顆粒,5分鐘分析時(shí)間,黑色曲線)的XBridge Premier GTx BEH SEC 450 ? 2.5 µm柱;和流速0.05 mL/min(5 μm顆粒,50分鐘分析時(shí)間,紅色曲線)的參考500 ?柱所獲得的AAV2(A)、AAV9(B)、AAV5-空(C)和AAV5-滿(D)SEC色譜圖的放大視圖。

    A. 

    相比5 μm的色譜柱,XBridge Premier GTx BEH 450 ? 2.5 μm具有更高的柱效,使得AAV的分離進(jìn)一步提升;

    B. 

    擁有MaxPeak HPS技術(shù)的XBridge Premier GTx BEH 450 ?色譜柱由于避免了次級(jí)作用力,分離結(jié)果重現(xiàn)性更高。


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    反相液相色譜法

    分離AAV載體中的衣殼蛋白(VP)

    • ACQUITY UPLC BEH C4, 1.7 μm, 300 ?, 2.1 ×100 mm蛋?分析專(zhuān)?柱(圖片部件號(hào):186004496

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    圖4. AAV8?殼蛋?分析?法開(kāi)發(fā)。(A) 使?ACQUITY UPLC BEH C8?譜柱并以甲酸作為流動(dòng)相改性劑得到的分離結(jié)果;(B) 使?相同的ACQUITY UPLC BEH C8?譜柱,以DFA作為流動(dòng)相改性劑得到的分離結(jié)果;(C) 使?ACQUITY UPLC BEH C4?譜柱并以DFA作為流動(dòng)相改性劑,分離度有所提升。梯度:(A) 流動(dòng)相A在32 min內(nèi)從70%降? 62%;(B) 流動(dòng)相A在16 min內(nèi)從67%降?63%;(C) 流動(dòng)相A在16 min內(nèi)從68%降?64%。流速:0.2 mL/min。

    A. 

    相較于甲酸等傳統(tǒng)的流動(dòng)相添加劑,二fu乙酸更有利于各衣殼蛋白的色譜分離,同時(shí)保持出色的MS靈敏度;

    B. 

    對(duì)比130 ?的C18,孔徑為300 ?的C4使得VP1、VP2得到進(jìn)一步分離,峰寬更窄,MS響應(yīng)進(jìn)一步提高。


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    親水作用色譜

    分離AAV載體中的衣殼蛋白(VP)

    • ACQUITY UPLC Amide糖蛋白分析專(zhuān)用柱, 300 ?, 1.7 μm, 2.1 mm × 150 mm(圖片部件號(hào):186007963)

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    圖5. 使用以下兩款 LC 色譜柱分離AAV6、AAV7和AAV8 衣殼病毒蛋白(VP)所得的譜圖對(duì)比:(a) Waters ACQUITY UPLC Amide糖蛋白分析專(zhuān)用柱(300 ?, 1.7 μm, 2.1 mm × 150 mm)和(b)Waters ACQUITY BEH C4色譜柱(300 ?, 1.7 μm, 2.1 mm × 150 mm)。在λem = 280 nm 和λex = 348 nm 波長(zhǎng)下監(jiān)測(cè)熒光強(qiáng)度(EU),且所有樣品的熒光強(qiáng)度都經(jīng)過(guò)歸一化處理。FD的譜峰歸屬根據(jù)準(zhǔn)確質(zhì)量數(shù)測(cè)定結(jié)果做了確認(rèn),標(biāo)示如下:Ox:氧化;P:磷酸化。

    ACQUITY BEH Amide色譜柱、ACQUITY BEH C4色譜柱在相同的離子對(duì)試劑(0.1%TFA v/v),且單位時(shí)間流動(dòng)相B的變化也相同(%B/min)條件下分離三種不同AAV血清型的衣殼蛋白。結(jié)果表明ACQUITY BEH Amide色譜柱可以更好地分離VP變體



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